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NMN如何抗衰老?

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NMN如何抗衰老?随着年龄增长,人体合成的量远远不够需求,人体内每20年的NAD+含量将减少近50%,到60岁左右,体内NAD+的含量降低至原有的12.5%。
人体内如果缺少NAD+,便会触发体内各种衰老的症状如记忆力衰退、心血管功能弱化、免疫力低下、睡眠质量差、精力下降、便秘、脱发和食欲不振等等。
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1楼2020-10-20 16:07回复
    CD38导致的NAD+水平下降,与血管细胞衰老密切相关
    在辛洪波教授等人的这项研究中,研究人员通过给小鼠连续4周皮下注射血管紧张素 II(490ng/min/kg),诱导小鼠产生高血压和血管结构改变,来模拟心血管疾病的发展过程。
    结果显示,在血管紧张素II诱导下,CD38合成正常的小鼠出现了心血管相关病变过程,而 CD38基因缺失小鼠的心血管疾病症状则发生了显著改善,例如高血压、血管壁厚度增加(表明血管僵硬和功能受损)等症状明显减轻,以及对维持血管完整性至关重要的蛋白质水平明显升高。
    此外,研究人员还使用78c(一种有效的 CD38 抑制剂)[7]来抑制小鼠体内CD38合成。结果显示CD38水平下降减轻了细胞DNA损伤,并减少了血管平滑肌细胞内的衰老相关标志物的积累。
    这些结果表明,CD38水平下降可以显著改善血管紧张素 II诱导的高血压和血管结构改变。因为CD38是降解NAD+的主要酶,所以研究人员总结道:“本研究证明了CD38不仅会促进高血压的血管结构改变,而且影响血管平滑肌细胞的衰老变化,进一步证实了NAD+水平下降与衰老密切相关。”
    补充NMN可升高NAD+水平,并缓解高血压和血管结构改变
    CD38不仅可以分解NAD+,还会消耗合成NAD+所必须的NMN等前体物质。这项研究发现,与正常小鼠相比,CD38基因缺失小鼠的主动脉细胞内NAD+水平增加了近50%。
    人体或动物可以通过补充NMN等方式来提高NAD+水平。为了探索NAD+补充剂是否可以挽救血管平滑肌细胞衰老,研究人员给正常小鼠口服NMN(300mg/kg)。结果显示小鼠体内NAD+水平升高,血管紧张素II诱导的高血压症状得到改善。(见图4)此外,血管的中膜厚度、中膜与管腔比值、胶原蛋白沉积分别减少了26%,27%和30%。(见图5)
    图4. NMN可减轻血管紧张素II诱导的小鼠高血压和血管结构改变。
    (a)每7天测量小鼠尾动脉血压,结果显示血管紧张素II会导致血压升高,而补充NMN可以显著改善高血压症状。
    (b)在第4周检测小鼠颈动脉收缩压和舒张压,结果显示补充NMN可以显著改善血管紧张素II导致的高血压症状。图5. 小鼠的胸主动脉切片显示,NMN使得血管的中膜厚度、中膜与管腔比值、胶原蛋白沉积减少。以上血管切片代表性图像分别用H&E染色、Gomori醛品红染色(亮紫色代表弹性蛋白)和Masson三色蓝染色(蓝色代表胶原沉积)。补充NAD+可显著缓解血管平滑肌细胞衰老
    研究人员还将小鼠的血管平滑肌细胞提取出来进行体外培养,并同样用血管紧张素II诱导细胞衰老。结果显示,给这些培养细胞补充NAD+(100μM)可以让血管平滑肌衰老细胞减少54%,而增加CD38水平会导致衰老细胞数量进一步增加。这些结果有力地证实了CD38导致的NAD+水平变化,可能是抗衰老治疗的潜在药理学靶点。(见图6)
    图6. NAD+水平增加与细胞衰老减少有关。
    (a)在添加血管紧张素II前4小时,在血管平滑肌细胞培养基中加入NAD+(100μM),并继续细胞培养3天,然后用衰老标记物(SA-β-gal)染色来检测细胞衰老情况。结果显示补充NAD+可显著减少血管紧张素II导致的衰老细胞数量。
    (b)用CD38过度表达的质粒转染平滑肌细胞,第二天加入血管紧张素II, 3天后用衰老标记物(SA-β-gal)染色。结果显示CD38过度表达会进一步增加衰老细胞数量。CD38和NAD+通过控制囊泡的合成来影响细胞衰老
    囊泡是真核细胞中十分常见的膜泡结构,细胞中一些大分子物质的储存、运输等主要通过囊泡来完成。有证据表明,衰老细胞会通过囊泡转运一些促进衰老的物质进入周围细胞中,导致邻近的健康细胞出现衰老[8]。
    在本项研究中,血管紧张素II会促进衰老的血管平滑肌细胞产生更多囊泡,加速邻近健康细胞的衰老过程。而降低CD38水平或提高NAD+水平则可以抑制囊泡的产生,从而抑制细胞衰老。


    2楼2022-06-10 11:05
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      参考文献
      Gan L, Liu D, Liu J, Chen E, Chen C, Liu L, Hu H, Guan X, Ma W, Zhang Y, He Y, Liu B, Tang S, Jiang W, Xue J, Xin H. CD38 deficiency alleviates Ang II-induced vascular remodeling by inhibiting small extracellular vesicle-mediated vascular smooth muscle cell senescence in mice. Signal Transduct Target Ther. 2021 Jun 11;6(1):223. doi: 10.1038/s41392-021-00625-0
      Westhoff, J. H. et al. Hypertension induces somatic cellular senescence in rats and humans by induction of cell cycle inhibitor p16INK4a. Hypertension 52, 123–129 (2008).
      Noureddine, H. et al. Pulmonary artery smooth muscle cell senescence is a pathogenic mechanism for pulmonary hypertension in chronic lung disease. Circ. Res. 109, 543–553 (2011).
      Mouchiroud, L. et al. The NAD(+)/Sirtuin pathway modulates longevity through activation of mitochondrial UPR and FOXO signaling. Cell 154, 430–441 (2013).
      Gomes, A. P. et al. Declining NAD(+) induces a pseudohypoxic state disrupting nuclear-mitochondrial communication during aging. Cell 155, 1624–1638 (2013).
      Childs, B. G., Durik, M., Baker, D. J. & van Deursen, J. M. Cellular senescence in aging and age-related disease: from mechanisms to therapy. Nat. Med. 21, 1424–1435 (2015).
      Haffner CD, Becherer JD, Boros EE, Cadilla R, Carpenter T, Cowan D, Deaton DN, Guo Y, Harrington W, Henke BR, Jeune MR, Kaldor I, Milliken N, Petrov KG, Preugschat F, Schulte C, Shearer BG, Shearer T, Smalley TL Jr, Stewart EL, Stuart JD, Ulrich JC. Discovery, Synthesis, and Biological Evaluation of Thiazoloquin(az)olin(on)es as Potent CD38 Inhibitors. J Med Chem. 2015 Apr 23;58(8):3548-71. doi: 10.1021/jm502009h. Epub 2015 Apr 10. PMID: 25828863.
      Urbanelli, L., Buratta, S., Sagini, K., Tancini, B. & Emiliani, C. Extracellular vesicles as new players in cellular senescence. Int. J. Mol. Sci. 17, 1408 (2016).
      https://www.nmn.cn/news/ev20n


      4楼2022-06-10 11:06
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