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细胞爬片免疫荧光染色:科研必备的详细教程

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一、实验步骤
1.细胞固定: 首先检查细胞的传代情况。打开含有预置细胞爬片的细胞培养板,在每个孔中滴加适量组织固定液,固定细胞15分钟。之后,用超纯水洗涤孔板3到4次,去除固定液残留,确保细胞的洁净。
2.细胞破膜:使用组化笔在细胞分布均匀的区域画圈,以防止抗体流失。随后加入3毫升破膜液,室温下孵育20分钟。破膜后,用PBS缓冲液洗涤三次,每次5分钟,彻底去除破膜液。
3.血清封闭:在标记的圈内均匀滴加由牛血清蛋白配制的3% BSA溶液,充分覆盖细胞区域,室温封闭30分钟。若一抗来源于山羊,建议采用驴血清进行封闭;其他来源则可继续使用BSA封闭液。
4.一抗处理: 小心去除孔中的封闭液,然后加入一抗工作液。将细胞孔板平置于湿盒中,置于4℃环境中孵育过夜,以确保抗体的充分结合。
5.二抗处理:将孔板置于水平摇床上,轻轻晃动,洗涤三次,每次5分钟,随后甩干孔中的液体。在圈内滴加与一抗相对种属的二抗,并室温孵育50分钟以便充分结合。
6.DAPI复染细胞核:用PBS缓冲液再次清洗孔板三次,每次5分钟,甩干后在圈内滴加即用型DAPI染液,完全覆盖组织,并在室温下避光孵育10分钟。染色完成后,用PBS缓冲液洗涤三次,每次5分钟。
7.封片:在爬片上加入适量的酒精,将爬片轻轻撬起,使其倚靠孔的边缘。吸净多余酒精后,将爬片放入65℃烘箱中烘干15分钟。烘干后,从烤箱中取出孔板,在载玻片上做好相应标记。然后,在载玻片上滴加中性树胶,使用镊子夹起标记的爬片,并使细胞面朝下封片。确保整个封片过程无气泡产生,以避免影响显微观察效果。
二、注意事项
1.观察与保存:已完成封片的切片应尽快进行显微观察和拍照,以记录染色结果。为了保持荧光的稳定性,将切片置于4℃环境中避光保存。
2.准备工作:在使用组化笔画圈之前,建议用棉签轻轻拭去细胞爬片周围多余的液体。这有助于快速绘制形成疏水圈,提升圈画效果,并确保样品周围的试剂不会扩散。
3.异源免疫荧光实验:当进行异源免疫荧光实验时,务必选择不同种属来源的一抗,以减少交叉反应的风险。同时,所选择的荧光标记二抗需与一抗的种属相匹配,以确保特异性结合并避免非特异性染色。
4.避光操作:从开始孵育二抗时起,所有实验步骤应在避光条件下进行,尤其要避免紫外光直接照射。荧光染料在紫外线下易于淬灭,这可能导致假阴性结果,影响结果准确性。
5.操作细节:在洗涤过程中,需小心轻柔,以防损坏或吹落珍贵的细胞样本。通过细致谨慎的操作,可以确保实验的成功和结果的可靠性。


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